原著論文：79報（下記、直近10年間のもの）

Okamoto T. (2026) In vitro fertilization (IVF): Production of distant hybrids with suitable genome combination. Breeding Science, in press


Rattanawong K., Totsuka K., Satoh A., Koshimizu S., Yano K., Okamoto T. (2026) Autonomous development and regeneration of isolated rice egg cells in a fertilization-independent manner. J. Exp. Bot., 77: 463–481

Masuo S., Akter N., Koshimizu S., Rattanawong K., Kitta T., Taki Y., Kinoshita A., Satoh A., Takasaki H., Ikeda M., Oshima Y., Mitsuda N., Ohme-Takagi M., Yano K., Okamoto T. (2025) Oryza sativa Baby Boom1 converts the developmental fate of rice egg cells from gametic into somatic status. iScience 28:113621.

Onda N., Satoh A., Nowroz F., Maryenti T., Mega R., Ishii T., *Okamoto T. (2025) Inter-subfamily cybrid plants between wheat and maize, Zeawheat: Production via an in vitro fertilization system, genome composition, and photosynthetic type. J. Exp. Bot., 76: 5912–5929.

Akter N., Tezuka T., Rattanawong K., Satoh A., Kinoshita A., Sato T., *Okamoto T. (2025) Role of paternal Oryza sativa Baby Booms (OsBBMs) in initiating de novo gene expression and regulating early zygotic development in rice. Plant J. 122: e70305.

*Toda E., Koshimizu S., Kinoshitan A., Higashiyama T., Izawa T., Yano K., Okamoto T. (2025) Transcriptional dynamics during karyogamy in rice zygotes. Development 152: DEV204497.

Maryenti T., Koshimizu S., Onda, N., Ishii T., Yano K., *Okamoto T. (2024) Wheat cybrid plants, OryzaWheat, regenerated from wheat–rice hybrid zygotes via in vitro fertilization system possess wheat–rice hybrid mitochondria. Plant Cell Physiol., 65: 1344–1357.　

*Yamada H., Kato N., Ichikawa M., Mannen K., Kiba T., Osakabe Y., Sakakibara H., Matsui M., Okamoto T. (2024) DNA- and selectable-marker-free genome-editing system using zygotes from recalcitrant maize inbred B73. Plant Cell Physiol., 65: 729–736.

Watanabe Y., Nobe Y., Taoka M., Okamoto T. (2023) The feeder effects of cultured rice cells on the early development of rice zygotes. Int. J. Mol. Sci. 24: 16541. doi: 10.3390/ijms242216541

Ichikawa M., Kato K., Toda E., Kashihara M., Ishida Y., Hiei Y., Isobe S., Shirasawa K., Hirakawa H., Okamoto T., *Komari T. (2023) Whole-genome sequence analysis of mutations in rice plants regenerated from zygotes, mature embryos, and immature embryos.　Breeding Sci. 73: 349–353. doi: 10.1270/jsbbs.22100

Zhang Y., Maruyama D., Toda E., Kinoshita A., Okamoto T., Mitsuda N., Takasaki H., Ohme-Takagi M. (2023) Transcriptome analyses uncover reliance of endosperm gene expression on Arabidopsis embryonic development. FEBS Lett. 597:407-417. doi:10.1002/1873-3468.14570

*Toda E., Kato N., Higashiyama T., Okamoto T. (2023) Genome editing approaches using reproductive cells/tissues in flowering plants. Frontiers in Genome Editing 4: 1085023. doi: 10.3389/fgeed.2022.1085023

*Toda E., Kiba T., Kato N., Okamoto T. (2022) Isolation of gametes and zygotes from Setaria viridis. J. Plant Res. 135: 627–633. https://doi.org/10.1007/s10265-022-01393-w

Maryenti T., Kato N., Ichikawa M., *Okamoto T. (2022) In vitro fertilization system using wheat gametes by electric fusion. Methods Mol. Biol. 2484: 259-273. doi: 10.1007/978-1-0716-2253-7_18

Aini H., Sato Y., Uno K., Higashiyama T., *Okamoto T. (2022) Dynamics of mitochondrial distribution during development and asymmetric division of rice zygotes. Plant Reproduction, 35: 47-60.

Maryenti T., Ishii T., *Okamoto T. (2021) Development and regeneration of wheat–rice hybrid zygotes produced by in vitro fertilization system. New Phytologist 232: 2369-2383. https://doi.org/10.1111/nph.17747

Rattanawong K., Koiso N., Toda E., Kinoshita A., Tanaka M., Tsuji H., *Okamoto T. (2021) Regulatory functions of ROS dynamics via glutathione metabolism and glutathione peroxidase activity in developing rice zygote. Plant J. 108: 1097-1115

Deushi R., Toda E., Koshimizu S., Yano K., *Okamoto T. (2021) Effect of paternal genome excess on the developmental and gene expression profiles of polyspermic zygotes in rice. Plants, in press 10:255. doi: 10.3390/plants10020255

*Toda E., *Okamoto T. (2020) Gene expression and genome editing systems by direct delivery of macromolecules into rice egg cells and zygotes. Bio Protocol 10: e3681. DOI:10.21769/BioProtoc.3681

*Toda E., *Okamoto T. (2020) A CRISPR/Cas9-based genome-editing using rice zygotes. Curr. Protocol Plant Biology, 5: e20111. doi.org/10.1002/cppb.20111

Rahman MH, Toda E., *Okamoto T. (2020) In vitro production of zygotes by electro-fusion of rice gametes. Methods Mol. Biol., 2122: 257-267. doi: 10.1007/978-1-0716-0342-0_18.

*Ohnishi Y., Kokubu I., Kinoshita T., Okamoto T. (2019) Sperm entry into the egg cell induces the progression of karyogamy in rice zygotes. Plant Cell Physiol., 60: 1656-1665. DOI: https://doi.org/10.1093/pcp/pcz077

*Toda E., Koiso N., Takebayashi A., Ichikawa M., Kiba T., Osakabe T., Osakabe Y., Sakakibara H., Kato N., *Okamoto T. (2019) An efficient DNA- and selectable marker-free genome editing system using zygotes in rice. Nature Plants 5: 363–368. DOI: https://doi.org/10.1038/s41477-019-0386-z

Rahman MH, Toda E., Kobayashi M., Kudo T., Takahara M., Iwami M, Watanabe Y., Sekimoto H., Yano K., *Okamoto T. (2019) Expression of genes from paternal alleles in rice zygotes and involvement of OsASGR-BBML1 in initiation of zygotic development. Plant Cell Physiol. 60: 725–737. DOI: https://doi.org/10.1093/pcp/pcz030

Maryenti T., Kato N., Ichikawa M., *Okamoto T. (2019) Establishment of an in vitro fertilization system in wheat (Triticum aestivum L.). Plant Cell Physiol. 60: 835-843. DOI: https://doi.org/10.1093/pcp/pcy250

Kim MY., Ono A., Scholten S, Kinoshita T., *Zilberman D., *Okamoto T., *Fischer R. (2019) DNA demethylation by ROS1a in rice vegetative cells promotes methylation in sperm. Proc. Natl. Acad. Sci. USA 116: 9652-9657. DOI: https://doi.org/10.1073/pnas.1821435116

Toda E., Ohnishi Y., *Okamoto T. (2018) An imbalanced parental genome ratio affects the development of rice zygotes. J. Exp. Bot. 69: 2609-2619. doi: 10.1093/jxb/ery094.

Sukawa Y., *Okamoto T. (2018) Cell cycle in egg cell and its progression during zygotic development in rice. Plant Reprod. 31: 107-116. doi: 10.1007/s00497-017-0318-x

Yamamoto T., Yoshida Y., Nakajima K., Tominaga M., Gyohda A., Suzuki H., Okamoto T., Nishimura T., Yokotani N., Minami E., Nishizawa T., Miyamoto K., Yamane H., Okada K., *Koshiba T. (2018) Antagonistic regulation of RSOsPR10 expression by jasmonate/ethylene and salicylate pathways is mediated by OsERF87 activator and OsWRKY76 Repressor, respectively, in rice roots. Plant Direct 2: e00049. https://doi.org/10.1002/pld3.49

Koiso N., Toda E., Ichikawa M., Kato N., *Okamoto T. (2017) Development of gene expression system in egg cells and zygotes isolated from rice and maize. Plant Direct 1: e00010, DOI: 10.1002/pld3.10

*Bowman JL., *Kohchi T., *Yamato KT., 79 authors, Okamoto T., 27 authors, Schmutz J. (2017) Insights into land plant evolution garnered from the Marchantia polymorpha genome. Cell 171: 287–304. DOI: http://dx.doi.org/10.1016/j.cell.2017.09.030

*Ohnishi Y. and Okamoto T. (2017) Nuclear migration during karyogamy in rice zygotes is mediated by continuous convergence of actin meshwork toward the egg nucleus. J. Plant Res. 130:339-348. doi: 10.1007/s10265-016-0892-2　

*Okamoto T. (2017) Analysis of proteins enriched in rice gamete. Methods Mol. Biol. 1669: 251-263. doi: 10.1007/978-1-4939-7286-9_20.

Park K., Kim Y., Vickers M., Park JS., Hyun Y., *Okamoto T., *Zilberman D., *Fischer R., *Feng X., *Choi Y., *Scholten S. (2016) DNA demethylation is initiated in the central cells of Arabidopsis and rice. PNAS, 113: 15138-15143. doi: 10.1073/pnas.1619047114.

Toda E., Ohnishi Y., *Okamoto T. (2016) Electro-fusion of gametes and subsequent culture of zygotes. Bio Protocol, 6: e2074 DOI:10.21769/BioProtoc.2074

Toda E., *Okamoto T. (2016) Formation of triploid plants via possible polyspermy. Plant Signaling & Behavior 11: e1218107. doi: 10.1080/15592324.2016.1218107.

Toda E., Ohnishi Y., *Okamoto T. (2016) Development of polyspermic rice zygotes. Plant Physiol. 171: 206-214, doi: http://dx.doi.org/10.1104/pp.15.01953

Matsumura T., *Okamoto T. (2016) Isolation of gametes from Brachypodium distachyon. Plant Biotech. 33: 39-43, http://doi.org/10.5511/plantbiotechnology.16.0123a

Suzuki H., Yokawa K., Nakano S., Yoshida Y., Fabrissin I., Okamoto T., Baluška F., *Koshiba T. (2016) Root cap-dependent gravitropic U-turn of maize root requires light-induced de novo auxin biosynthesis via YUC-pathway in root apex. J. Exp. Bot. 67: 4581-4591.

Takeuchi K., Hasegawa H., Gyohda A., Komatsu S., Okamoto T., Okada K., Terakawa T., *Koshiba T. (2016) Overexpression of RSOsPR10, a root-specific rice PR10 gene, confers tolerance against drought stress in rice and drought and salt stresses in bentgrass. Plant Cell, Tissue and Organ Culture (PCTOC) 127:35–46

Ohnishi Y., *Okamoto T. (2015) Karyogamy in rice zygotes: Actin filament-dependent migration of sperm nucleus, chromatin dynamics, and de novo gene expression. Plant Signaling & Behavior, 10: e989021, DOI:10.4161/15592324.2014.989021

Ohnishi Y., *Okamoto T. (2015) Microscopic observation, three-dimensional reconstruction, and volume measurements of sperm nuclei. Bio Protocol, 5: e1437, DOI:10.21769/BioProtoc.1437


総説 (reviews)

*Toda E., *Okamoto T. (2020) Polyspermy in angiosperms: Its contribution to polyploid formation and speciation. Mol Reprod Dev. 87: 374-379. DOI: 10.1002/mrd.23295

*Okamoto T., Ohnishi Y., Toda E. (2017) Development of polyspermic zygote and possible contribution of polyspermy to polyploid formation in angiosperms. J. Plant Res., 130: 485-490. doi: 10.1007/s10265-017-0913-9

*Okamoto, T. (2014) Gene and protein expression profiles in rice gametes and zygotes: a cue for understanding the mechanisms in gametic and/or early zygotic development of angiosperms. In “Sexual Reproduction in Animals and Plants”, Eds, Sawada H., Inoue H., Iwano M., Springer, pp369-382.

*Okamoto T. (2006) Transport of proteases to the vacuole: ER export by-passing golgi? D.G. Robinson ed. The Plant Endoplasmic Reticulum. Plant Cell Monogr. 4: 125-139.

Okamoto T., *Kranz E. (2005) In vitro fertilization - a tool to dissect cell specification from a higher plant zygote. Embryology of Seed Plants: Then and Now. Professor Panchanan Maheshwari Centenary Special Issue of Current Science. 89: 1861-1869.

Okamoto T., *Kranz E. (2005) Major proteins in plant and animal eggs. Acta Biologica Cracoviensia, Series Botanica, 47, 17-22.

*Kranz E., Hoshino Y., Okamoto T., Scholten S. (2004) Double fertilization in vitro and transgene technology. Plant Biotechnology and Molecular Markers. Srivastava, P.S.; Narula, Alka and Srivastava, Sheela (eds), Kluwer Academic Publishes, Dordrecht, pp. 31-42.

*Okamoto T., Minamikawa T. (1998) A vacuolar cysteine endopeptidase (SH-EP) that digests seed storage globulin: characterization, regulation of gene expression, and posttranslational processing. J. Plant Physiol. 152: 675-682.

*Okamoto T., Minamikawa T. (1997) A cysteine endopeptidase (SH-EP) in geminatedVigna mungo seeds; post-translational processing and intracellular transport. Basic and Applied Aspects of Seed Biology. Kluwer Academic Publishers. pp563-568.


その他出版物

岡本 龍史 (2025) 「野生イネの生殖細胞融合」、育種学研究 27:79-80

手捲 萌乃、岡本 龍史、木下 温子（2024）「イネ科植物の受精卵発生から考える被子植物の体軸形成機構」PLANT MORPHOLOGY, vol. 36, 31-37.

テティ マリエンティ、恩田伸乃佳、樽󠄀谷英賢、石井孝佳、岡本龍史 (2023) 「三大穀物間における遺伝資源の相互利用：イネ−コムギ交雑植物とトウモロコシ−コムギ交雑植物」、ゲノム編集の最新技術と医薬品・遺伝子治療・農業・水畜産物・有用物質生産への活用　（技術情報協会）、第3章8節

テティ マリエンティ、恩田伸乃佳、樽谷英賢、石井孝佳、岡本龍史 (2023) 「イネコムギとトウモロコシコムギ：三大穀物間における遺伝資源の相互利用」、バイオインダストリー2023年4月号、pp39-43.

加藤　紀夫、山田創、岡本　龍史 (2023) 「受精卵を用いたDNAフリーゲノム編集イネおよびトウモロコシの作出」、ゲノム編集の最新技術と医薬品・遺伝子治療・農業・水畜産物・有用物質生産への活用　（技術情報協会）、第4章12節

テティ マリエンティ、石井 孝佳、岡本 龍史 (2022) 「コムギ−イネ間の生殖的隔離克服によるイネ遺伝資源のコムギへの導入」、アグリバイオ2022年7月号、pp 65-69.

加藤　紀夫、岡本　龍史 (2021) 「植物受精卵でのゲノム編集技術の開発と品種改良への　応用とその課題」、ゲノム編集技術を応用した製品開発とその実用化（技術情報協会）、第7章2節 pp522-528

岡本 龍史、戸田絵梨香、加藤 紀夫 (2020) 「植物受精卵を用いたゲノム編集」、植物の化学調節、55 (1) 52-56.

加藤 紀夫、戸田絵梨香、岡本 龍史 (2020) 「イネ受精卵への一過的導入法」、進化するゲノム編集vol. II（NTS出版）、第3章 pp27-31

戸田絵梨香、岡本 龍史 (2019) 「イネ受精卵発生過程における雌雄配偶子の機能差および父性アリル依存的遺伝子発現による受精卵の発生誘導」、アグリバイオ2019年4月号、pp 73-78.

岡本龍史 (2017) in vitro 受精系と育種、「受精後雑種障壁研究の育種利用に向けて」、育種学研究、 Vol. 19 (No. 1) p. 35-36.

井川智子、東山哲也、岡本龍史 (2014)「第7章：被子植物の受精2：花粉管の伸長とガイダンス、配偶子の融合、核の合一」、動植物の受精学：共通機構と多様性、澤田均編、化学同人、pp103-118.

岡本龍史 (2009) 受精の生理、種子の科学とバイオテクノロジー、原田久也他/編、学会出版センター、pp25-27.

岡本龍史 (2006) 胚発生、植物ホルモンの分子細胞生物学、小柴共一・神谷勇治/編、講談社、pp122-134.

岡本龍史、内海貴夫(2006) In vitro 受精系を用いた胚発生研究法、植物の生長調節 41:75-86.

岡本龍史 (2002) KDEL小胞を介した液胞タンパク質の輸送系．植物細胞工学シリーズ17: 42-50.

岡本龍史、南川隆雄 (2002) 発芽種子の貯蔵物質分解機構：液胞加水分解酵素・KDEL小胞・オートファジー．化学と生物40: 790-798.


特許

異種ミトコンドリアの共存による雄性不稔コムギの作出
発明者：岡本龍史、恩田乃々佳、百瀬幸穂、石井孝佳
出願者：東京都立大学、鳥取大学
特願2026-35851（整理番号P2025-0022、出願日・2026年3月6日）

多親雑種の作出方法および多親雑種植物
発明者：迫田和馬、大西由之介、岡本龍史
出願者：NTT株式会社、東京都立大学
特願2026-4523（整理番号5250841JP1、出願日・2026年1月14日）

植物の作出方法およびソルガムの卵細胞の単離方法
発明者：迫田和馬、大西由之介、岡本龍史
出願者：NTT株式会社、東京都立大学
特願2026-31416（整理番号5251227JP1、出願日・2026年2月27日）

植物の配偶子と体細胞の融合細胞及びその製造方法
発明者：戸田絵梨香、岡本龍史
出願者：東京都立大学
特願2022-155645（出願番号、出願日・2022年9月29日）

融合細胞、融合細胞の製造方法、細胞塊、植物体及び植物体の製造方法
発明者 :岡本龍史、石井孝佳、矢野健太郎、マリエンティ テティ
出願人 : 東京都公立大学法人、学校法人明治大学、国立法人鳥取大学
特願2020-0021 (2020-11-10 出願)

植物に物質を導入する方法
発明者：加藤紀夫、市川雅子、岡本龍史、古磯成美、木羽隆俊、戸田絵梨香
出願者：日本たばこ産業、理化学研究所、首都大学東京
WO2018/143480 A1（国際公開番号、国際公開日・2018 年8月9日）
PTC/JP2018/004103（国際出願番号、出願日・2018 年1月31日）
特願2017-015371（出願番号、出願日・2017 年1月31日）

植物に物質を導入する方法
発明者：加藤紀夫、岡本龍史、木羽隆俊、戸田絵梨香　
出願者：日本たばこ産業、理化学研究所、首都大学東京
WO2017/171092 A1（国際公開番号、国際公開日・2017 年10月5日）
PTC/JP2017/013868（国際出願番号、出願日・2017 年3月28日）
特願2016-070288（出願番号、出願日・2016 年3月31日）

植物配偶子の電気融合による同質および異質倍数性植物の作出
発明者：岡本龍史、大西由之介、戸田絵梨香　
出願者：首都大学東京
特許第6436701号（登録日・H30 (2018) 年11月22日
特願2014-1951165（出願番号、出願日・H26 (2014) 年9月25日）

ストレス応答性遺伝子が導入された形質転換植物　
発明者：小柴共一、寺川輝彦、長谷川久和、小松節子、岡本龍史、古川聡子、島谷健太郎
出願人：首都大学、北興化学、農業生物資源研
特願 2006-018661
国際出願　PCT/JP2007/50522　

キチナーゼ遺伝子が導入されたシクラメン属植物の形質転換体
発明者：寺川輝彦、山村智通、澁澤直恵、小柴共一、岡本龍史、西澤洋子
出願人：（株）北興化学，（独）農業生物資源研
特願2004-265282

日本植物生理学会、日本植物学会、日本育種学会

• 一般生物学II
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• 組織再編前旧課程の同時開講科目等が含まれており、掲載されている全ての科目を開講するわけではありません。